Cariotipo del tití gris (Saguinus leucopus): similitudes con el cariotipo humano

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Autores

Juan Hember Tabares
Carlos Humberto Fierro
Paola Del Pilar Pulido
Humberto Ossa Reyes

Resumen

El tití gris (Saguinus leucopus) es un primate endémico de Colombia cuyo cariotipo se describe en el presente estudio a partir de una pareja de individuos ubicados en el Centro de Rehabilitación de Fauna Silvestre del Oriente de Caldas, Colombia. Las muestras de sangre fueron recolectadas de la vena femoral y anticoaguladas con heparina de sodio. Los cromosomas se obtuvieron por el método clásico de cultivo de linfocitos y bandeamiento Q y G Los individuos presentan 46 cromosomas (2n = 46: 30Bi, 14A); cromosomas sexuales XX en la hembra y XY en el macho (quimerismo 46,XX/46,XY en este último). Se propone un ideograma para el cariotipo del Tití Gris. Se observan amplias semejanzas en los cromosomas X y 5 de S. leucopus con los cromosomas X y 19 humanos, respectivamente. Otras similitudes parciales se evidenciaron entre los cromosomas 1 de ambas especies, 2 y 14 de S. leucopus con el 7 humano. La comparación del tamaño de regiones exónicas de dos genes de S. leucopus y Homo sapiens no arrojó diferencia.

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Referencias

1. Poveda K. Uso de hábitat de dos grupos de tití de pies blancos, Saguinus leucopus, en Mariquita, Colombia. Trabajo de grado. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2000.
2. IUCN Lista roja. http://www.iucnredlist.org/details/19819. 2008.
3. Leguizamón N, Ruiz-García M, Castillo MI. Aplicaciones de los análisis genético poblacionales a partir de genotipos multilocus y metodologías basadas en modelos bayesianos para la conservación del primate Saguinus leucopus. Revista: Conservación ex situ. Investigación para el manejo en cautiverio y conservación de la fauna silvestre. Editorial Leguizamón. Departamento Técnico Administrativo de la Alcaldía Mayor de Bogotá. 2006.
4. Carroll B. Guías para el estudio de calitrícidos. Bristol Zoo Gardens, 2002.
5. Scheneider H. The Current Status of the New World Monkey Phylogeny. An Acad Bras Ciênc 2000;72:165-172.
6. Nagamachi CY, Pieczarka JC, Muniz JA, Barros RM, Mattevi MS. Proposed chromosomal phylogeny for the South American primates of the Callitrichidae family (Platyrrhini). Am J Primatol. 1999;49:133-152.
7. Nagamachi, C.Y. and Pieczarka, J.C. Chromosome studies of Saguinus midas niger (Callithrichidae, Primates) from Tucuruí, Pará, Brazil: Comparison with the karyotype of Callithrix jacchus. Am J Primatol. 1988; 14:277-284.
8. Mendes SM, de Souza RM. Cytogenetic study of the genus Saguinus (Callithrichidae, Primates). Braz J Genet. 1997;20:1-5.
9. Moorhead PS, Norwell PC, Melman WJ, Battips DM and Hungerford DA. Chromosome preparation of leucocytes cultured from human peripheral blood. Exp Cell Res. 1960;20:613-615.
10. Caspersson T, Zech l, Johansson, C, Modest EJ. Identification of human chromosomes by DNA-binding fluorescent agents. Chromosoma. 1970;30:215-227.
11. Seabright, M. Rapid banding techniques for human chromosomes. Lancet 1971;2: 971-972.
12. Poort SR, Rosendaal FR, Reitsma PH, Bertina RM. A common Genetic Variation in the 3’Unstranslated region for the Prothrombin gene is associated with elevated plasma Prothrombin levels and an increase in venous thrombosis. Blood 1996;88:3698-3703.
13. Koksal V, Baris L, Etlik O. Primer-engineered multiplex PCRRFLP for detection of MTHFR C677T, Prothrombin G2021OA and Factor V Leiden mutations. Exp Mol Pathol 2007;83:1-3.
14. Fox M, Brieva C, Moreno C, MacWilliams P, Thomas C. Hematologic and serum biochemistry reference values in wildcaught white-footed tamarins (Saguinus leucopus) housed in captivity. J Zoo Wildl Med. 2008;39:548-557.
15. Murphy WJ, Frönicke L, O’Brien SJ and Stanyon R. The origin of human chromosome 1 and its homologs in placental mammals. Genome Res. 2003;13:1880-1888.
16. Evans PC, Lambert N, Maloney S, Furst DE, Moore JM, Nelson JL. Long-term fetal microchimerism in peripheral blood
mononuclear cell subsets in healthy women and women with scleroderma. Blood. 1999;93:2033-2037.
17. Johnson KL, Nelson JL, Furst DE, McSweeney PA, Roberts DJ, Zhen DK, Bianchi DW. Fetal cell microchimerism in tissue from multiple sites in women with systemic sclerosis. Arthritis Rheum. 2001;44:1848-1854.
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DOI: http://dx.doi.org/10.22490/24629448.402

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