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Estudio comparativo de medios de cultivo para crecimiento y recuperación del Streptococcus mutans ATCC 25175 “in vitro”

Estudio comparativo de medios de cultivo para crecimiento y recuperación del Streptococcus mutans ATCC 25175 “in vitro”




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Artículo Original

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Estudio comparativo de medios de cultivo para crecimiento y recuperación del Streptococcus mutans ATCC 25175 “in vitro”. (2005). NOVA, 3(3). https://doi.org/10.22490/24629448.15

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PlumX
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Furthermore, the authors keep their property intellectual rights over the articles.

 

Rosalba Medina
    Luis Carlos Moreno
      María Constanza Velasco
        Sonia jakeline Gutiérrez

          The present study evaluated the recovery in vitro of S. mutans ATCC 25175 in seven culture of media: Mitis Salivarius Agar (MSA), Mitis Salivarius Agar-Bacitracin (MSB), Mitis Salivarius Agar-Kanamycin-Bacitracin (MSKB), Mitis Salivarius Agar-Bacitracin-Sulfisoxazole (MS-MUT), Trypticase soy-Extract of yeast-Sucrose-Bacitracin Agar (TYS20B) (media indexed as selective), Infusion Brain Heart Agar (BHI) (enriched medium) y Todd Hewitt Agar (TH) (selective medium for Streptococcus). A bigger recovery of the microorganism was demonstrated in the medium TYS20B, continued in decrease order: BHI, MSA, TH, MS-MUT, MSB and MSKB. The medium TYS20B was the most appropriate for the microorganism; presenting a percentage of significantly more recovery to the other evaluated selective media, coinciding with the other studies in the world for recovery the S.mutans.

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          1. Ministerio de Salud. Galviz RV. III Estudio Nacional de Salud Bucal - ENSAB III; II Estudio Nacional de Factores de
          2. Riesgo de Enfermedades Crónicas . ENFREC II; Tomo VII Estudio Nacional de Salud Bucal, Colombia 1999.
          3. Guatibonza S. .Extracción del liquido de la cáscara de la nuez del marañón y determinación de la actividad
          4. antibacteriana en Streptococcus mutans. Trabajo de Pregrado Química- Facultad de Ciencias Universidad Nacional de Colombia Bogotá D.C.1999.
          5. Gaitán SV, Rico Y, Medina R. .Estabilidad química y antibacteriana en Streptococcus mutans del liquido de la cáscara de la nuez del marañón (Anacardium occidentale) calentado a temperaturas de industrialización de la almendra
          6. .. Trabajo de Pregrado Química. Facultad de Ciencias Universidad Nacional de Colombia Distinción Meritoria, Bogotá D.C. 2000.
          7. Pinto M, Rodríguez MC, Medina R. .Prueba .in vitro. Del líquido de la cáscara de la nuez del marañón (Anacardium occidentale) en el Streptococcus mutans.. Trabajo de Pregrado Facultad de Odontología Bogotá D.C. 1999; Distinción meritoria. Mención de honor XI Encuentro de Investigación en Odontología ACFO Medellín 2000.
          8. Garzón F, Flomin B, Jiménez J, Medina R. .Efecto de la formación de sales de los componentes activos del líquido de la cáscara de la nuez del marañón (Anacardium occidentale) en la actividad antimicrobiana sobre el
          9. Streptococcus mutans.. Trabajo de Pregrado Facultad de Odontología Universidad Nacional de Colombia Bogotá D.C.
          10. González MC y Col. Caries Dental. Guía de Práctica Clínica basadas en la evidencia, Proyecto ACFO.1998.
          11. Martínez PM y Col. Capacidad del Streptococcus mutans para fermentar xilitol y sacarina sódica in vitro. Universitas
          12. Odontológica, Pontificia Universidad Javeriana Bogotá D.C. 2001.
          13. Delgado y Col. Comparación del crecimiento in vitro de Streptococcus mutans y Lactobacillus acidophilus con edulcorantes. Universitas Odontológica, Pontificia Universidad Javeriana Bogotá D.C. 1999.
          14. Gonzáles LP. Efecto del aspartame sobre el crecimiento del Streptococcus mutans a nivel experimental. Rev. del Centro de Estudios en Salud (CES) Medellín, 1996.
          15. Peña. Adherencia de Streptococcus orales comparando diferentes rugosidades superficiales de la porcelana. Rev. CES Medellín, 1995.
          16. Enrique F y Col. Efecto de la formación de sales de los componentes activos del líquido de la cáscara de la nuez del marañón (Anacardium occidentale) en la actividad antimicrobiana sobre el S. mutans. Tesis, Facultad de Odontología Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C. 2001.
          17. Morales E. Acción del Streptococcus mutans sobre el dextran exógenos. Tesis, Facultad de Odontología Universidad Nacional de Colombia Bogotá D.C. 1982.
          18. Little WA et al. Comparative recovery of Streptococcus mutans on ten isolation media. J. Clin. Microbiol. 1977;
          19. (6):578-583.
          20. Linke B, Harald A. New Medium for the Isolation of Streptococcus mutans and its differentiation from other oral Streptococci. J. Clin. Microbiol. 1977; 5(6):604-609.
          21. Matsukubo T et al. A practical method for differentiating the salivary levels of Streptococcus mutans using a stabilized selective broth. Bull. Tokyo Dent. Coll. 1983; 24(4):195- 202.
          22. Arneberg P et al. Selection of Streptococcus mutans and Lactobacilli in an intra-oral human caries model. J. Dent.
          23. Res. 1984; 63(10):1197-1200.
          24. Ohta K et al. A study of a stabilized selective broth method for assessing Streptococcus mutans levels. Bull. Tokyo Dent. Coll. 1984; 25(2):53-56.
          25. Tanzer JM et al. Glucose-Sucrose-Potassium Tellurite- Bacitracin Agar, an Alternative to Mitis Salivarius-Bacitracin Agar for Enumeration of Streptococcus mutans. J. Clin. Microbiol. 1984; 20(4):653-659.
          26. Wade WG et al. An improved medium for isolation of Streptococcus mutans. J. Med. Microbiol. 1986; 22:319-
          27. Schaeken MJ et al. Comparative recovery of Streptococcus mutans on five isolation media, including a new simple selective medium. J. Dent. Res. 1986; 65(6):906-908.
          28. Rogers AH. The effects of sorbate on oral Streptococci grown in continuous culture. J. Dent. Res.1986; 65(6):895-898.
          29. Svanberg M, Krasse B. Comparative recovery of mutans Streptococci on two selective media. Caries Res. 1990; 24:36-38.
          30. Kimmel L et al. A modified Mitis Salivarius Medium for a diagnostic test. Oral Microbiol. Inmunol. 1991; 6:275-279.
          31. Dasanayake AP et al. Differences in the detection and enumeration of mutans Streptococci due in differences in methods. Arch. Oral Biol. 1995; 40(4):345-351.
          32. Wan AKL et al. Comparison of five selective media for growth and enumeration of Streptococcus mutans. Australian Dent. J. 2002; 47(1):21-26.
          33. Beigthon D. A simplified procedure for estimating the level of Streptococcus mutans in the mouth. Br. Dent. J. 1986;
          34. :329-330.
          35. Hirasawa M, Takada K. A new selective medium for Streptococcus mutans and the distribution of S. mutans and
          36. S. sobrinus and their serotypes in dental plaque. Caries Res. 2003; 37(3):212-217.
          37. Lager A et al. Cultivatable bacteria in dentine alter caries excavation using rose-bur or Carisolv. Caries Res. 2003;
          38. :206-211.
          39. Pieniäkkinen K. Comparison of the efficacy of 40% chlorhexidine varnish and 1% chlorhexidine-fluoride gel in decreasing the level of salivary mutans Streptococci. Caries Res. 1995; 29:62-67.
          40. Wennerholm K, Emilson C. Sucrose retention and colonization by mutans Streptococci at different sites of the dentition. Caries Res. 1995; 29:396-401.
          41. Chestnutt et al. Evaluation of the In vitro cariogenic potential of Streptococcus mutans strains isolated from 12-year-old children with differing caries experience. Caries Res. 1995; 29:455-460.
          42. Finegold S, Martín WJ. Diagnóstico Microbiológico de Bailey-Scott. 6ª edición: Editorial Médica Panamericana
          43. 670p.
          44. Westergren G, Krasse B. Evaluation of a micromethod for determination of Streptococcus mutans and Lactobacillus
          45. infection. J. Clin. Microbiol. 1978; 7(1):82-83.
          46. Vandevenne CA, Ribes ME. Métodos de análisis microbiológicos de los alimentos. Editorial Díaz de Santos
          47. 248p.
          48. Isaza C y Col. Fundamentos de farmacología en terapéutica. 2ª edición: Editorial Guillermo Lagos R. 1992. p. 503.
          49. Iwami Y. Effect of sucrose monolaurate on acid production, levels of glicolytic intermediates, and enzyme activities of Streptococcus mutans. J. Dent. Res. 1995; 74(9):1613-1617.
          50. Facklam RR. Manual de procedimientos para el aislamiento e identificación de Streptococcus. Organización Panamericana de la Salud. 1980.
          51. Hirasawa M, Takada K. A novel selective medium for isolation of Streptococcus mutans. J. Microbiol. Methods 2005; 60: 189-193.
          52. -------------------------------------------------------------------------------
          53. DOI: http://dx.doi.org/10.22490/24629448.15
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