Prevalencia de hipoacusia neurosensorial inducida por ruido en empresas del sector madera de la ciudad de Cartagena. 2015
Artículo barra lateral
PDF
FLIP
Contenido principal del artículo
Autores
Resumen
Objetivo: Determinar prevalencia de hipoacusia neurosensorial inducida por ruido en los trabajadores expuestos a ruido en cuatro empresas dedicadas al procesamiento de madera en la ciudad de Cartagena. Método: Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal en cuatro empresas de aserríos del sector madera de la ciudad de Cartagena, dedicadas a la transformación de la troza de madera en tablas y listones a través de operaciones de corte, cepillado y canteado de la madera. La población objeto de estudio fue de veinte trabajadores del área de maquinado expuestos a ruido. Se hizo una evaluación preliminar para conocer en forma detallada el ambiente de trabajo y las circunstancias bajo las cuales se exponen los trabajadores al ruido, las características del ruido y sus fuentes. Resultados: La prevalencia de hipoacusia neurosensorial inducida por ruido fue del 20%. Se encontró en el grupo objeto de estudio un 5 % con hipoacusia entre trabajadores de 41 a 45 años de edad y un 15% en trabajadores de más de 46 años de edad. En cuanto al tiempo de servicio en las distintas empresas, los trabajadores de 1 a 30 años presentaron el 20% de hipoacusia neurosensorial inducida por el ruido. En la medición de la exposición al ruido basada por puesto de trabajo en las distintas empresas seleccionadas se determinó el nivel continuo equivalente que oscila entre 95,7 dB(A) a 101,9 dB(A) el cual sobrepasa los valores límites permisibles de acuerdo a los criterios de ACGIH de USA. El nivel de riesgo es alto en una de las empresas mientras se encontró un nivel de riesgo medio en las otras empresas seleccionadas.
Palabras clave:
Detalles del artículo
Licencia
NOVA por http://www.unicolmayor.edu.co/publicaciones/index.php/nova se distribuye bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivar 4.0 Internacional.
Así mismo, los autores mantienen sus derechos de propiedad intelectual sobre los artículos.
Referencias
2. Cuatrecasas José, Prima Flora Colombiana. COMPOSITAE – ASTEREAE. Instituto Botánico de la Universitaria; 1969: 233-299.
3. Bremer K. Asteraceae: cladistics and classification. Portland, Oregon. Timber Press; 1994.
4. Cuatrecasas J. Miscellaneous notes on Neotropical Flora, XV. New taxa in the Astereae Phytologia, 1982; 52: 166-177. 5. Arriaga-Giner, F. J., E. Wollenweber, I. Schober, P. Dostal and S. Braunt, 2β-Hydroxyhautriwaic acid, a clerodane type diterpenoid and other terpenoids from three Baccharis species Phytochemystry. 1986; 25(3): 719-721.
6. Bohlmann Ferdinand, Banerjee Shanta, Jakupovic Jasmin, Grenz Michael, Misra Laxmi N., Schmeda-Hirschmann Guillermo, King Robert M. and Robinson Harold, Clerodane and labdane diterpenoids from Baccharis species Phytochemystry, 1985; 24(3): 511-515.
7. Bohlmann Ferdinand, Zdero Christa, King Robert M. and Robinson Harold, Kingidiol, a kolavane derivative from Baccharis kingii Phytochemystry, 1984; 23(7): 1511-1512. 8. Bohlmann,Ferdinand Scheidges Cornelius, Zdero Christa, King Robert M. and Robinson Harold, Ent-Labdanes from Baccharis Sternbergiana Phytochemystry, 1984; 23(5): 1109. 9. Bruce B. Jarvis, Norman B. Pena, S. Nilgün Cömezó lu and M. Madhusudana Rao, Non-trichothecenes from baccharis megapotamica Phytochemystry. 1986; 25(2): 533-535. 10. Faini Francesca, Rivera Patricio, Mahú Manuel and Castillo Mariano, Neo-clerodane diterpenoids and other constituents from Baccharis species Phytochemistry, 1987; 26(12): 3281-3283. 11. Gambaro Vicente, Chamy María C. and Garbarino Juan A. Neo-clerodane diterpenoids from Baccharis macraei, Phytochemystry, 1987; 26(2): 475-477.
12. Gambaro Vicente, Chamy María C., Garbarino Juan A., SanMartin Aurelio and Castillo Mariano, Neo-clerodane diterpenoids from Baccharis macraei, Phytochemystry, 1986: 25(9): 2175-2177.
13. Givovich Arturo, San-Martín Aurelio and Castillo Mariano, Neo-clerodane diterpenoids from Baccharis incarum Phytochemystry, 1986; 25(12): 2829-2831.
14. Thais Maira A. Biondo, Mirtes M. Tanae, Eliana Della Coletta, María Teresa R. Lima-Landman, Antonio J. Lapa, Caden Souccar June. Antisecretory actions of Baccharis trimera (Less.) DC aqueous extract and isolated compounds: Analysis of underlying mechanisms Journal of Ethnopharmacology, 2011; 136(2): 368-373.
15. Rodrígues Carmem R.F., Dias Jacqueline H., Semedo Juliane G., da Silva Juliana, Ferraz Alexandre B.F., Picada Jaqueline N., Mutagenic and genotoxic effects of Baccharis dracunculifolia (D.C.) Journal of Ethnopharmacology, 2009; 124(2): 321-324. 16. Da Cruz Pádua Bruno, Silva Lucas Dornela, Rossoni Joamyr Victor Júnior, Humberto Jorge Luiz, Martins Chaves Míriam, Silva Marcelo Eustáquio, Pedrosa Maria Lucia, Caldeira Costa Daniela, Antioxidant properties of Baccharis trimera in the neutrophils of Fisher rats Journal of Ethnopharmacology, 2010; 129(3): 285-420. 17. Xavier V.B., Vargas R.M.F., Cassel E., Lucas A.M., Santos
M.A., Mondin C.A., Santarem E.R., Astarita L. Sartor V., T., Mathematical modeling for extraction of essential oil from Baccharis spp. by steam distillation Industrial Crops and Products, 2011; 33(3): 599-604.
18. Egly Feresin Gabriela, Tapia Alejandro, Gimenez Antonio, Gutierrez Ravelo Angel, Zacchino Susana, Sortino Maximiliano, Schmeda-Hirschmann Guillermo, Constituents of the Argentinian medicinal plant Baccharis grisebachii and their antimicrobial activity Journal of Ethnopharmacology, 2003; 89(1): 73-80.
19. Cannel R., J.P., Natural Products Isolation. Humana Press, 1998: 472.
20. Anderson, T. G. An evaluation antimicrobial susceptibility testing. In antimicrobial agents annal. New York, Plenum Press; 1961. 21. Barry, A. L. An improved single disk method for testing the antibiotic. Susceptibility of rapidly growing pathogens. Am. J. Clin. Pathol. 1970; 53: 149-158.
22. Brand-WIlliams, W.; Cuvelier, M. E. and Berset, C. Use of a Free Radical Method to Evaluate Antioxidant Activity. Lebens. Wiss. U.Technol., 1995; 28: 25-30.
23. Prior, R.L.; Wu, X. and Schaich, K. Standardized Methods for Determination of Antioxidant Capacity and Phenolics in Foods and Dietary Supplements. J. Agric. Food Chem. 2005; 53: 4290-4302.
24. Suja, K.P.; Jayalekshmy, A. and Arumughuan, C. Free Radical Scavenging Behaviour of Antioxidant Compounds of Sesame (Sesame indicum L.) in DPPH• System. J. Agric. Food Chem. 2004;52: 912-915.
25. Tapia Alejandro, Rodriguez Jaime, Theoduloz Cristina, Lopez Susana, Egly Feresin Gabriela, Schmeda-Hirschmann Guillermo, Free radical scavengers and antioxidants from Baccharis grisebachii Journal of Ethnopharmacology, 2004; 95(2): 155-161.
26. Villano, D.; Fernández-Pachón, M.S.; Moyá, M.L.; Troncoso, A.M. and García-Padilla, M.C. Radical Scavening Ability of Polyphenolic Compounds Towards DPPH Free Radical. Talanta, 2007; 71: 230.
27. Nausa, J. G. (2014). “Evaluación Clínica y radiográfica de injertos biocerámicos tipo Hidroxiapatita como alternativa en la reconstrucción de alveolos dentarios postexodoncia.”
28. Galvez, Z. Y. A. and V. E. M. Burbano (2015). “Bacillus: género bacteriano que demuestra ser un importante solubilizador de fosfato.” NOVA Publicación en Ciencias Biomédicas. 29. Ramírez, L. C. C., et al. (2014). “Determinación de la presencia de bacterias patógenas para el humano en aguas de riego en la cuenca alta de la sabana de Bogotá; DC Colombia.” Nova 12(22).
30. Corrales, L. C., et al. (2015). “Bacterias anaerobias: procesos que realizan y contribuyen a la sostenibilidad de la vida en el planeta.” Nova 13(24): 55-82.
==========================================
DOI: http://dx.doi.org/10.22490/24629448.1726
Horario: Lunes a Viernes: 8:00 a.m. a 5:00 p.m
