Bacillus thuringiensis: en el manejo del agente de la pudrición blanda de la papa Erwinia carotovora

Bacillus thuringiensis for the control of the potato soft rot Erwinia carotovora

En Colombia el cultivo de papa es el cuarto en importancia en la economía del país, y su producción alcanza las 300 millones de toneladas aproximadamente. Erwinia carotovora es una bacteria Gram negativa, anaeróbica facultativa causante de la pudrición blanda de la papa, puede llegar a generar hasta el 100% de daño en la cosecha, lo cual ocasiona grandes pérdidas económicas. Se ha establecido que la bacteria Bacillus thuringiensis es capaz de suprimir la virulencia de E. caratovora debido a que produce N-acil homoserina-lactonasa, una potente enzima que degrada de N acilhomoserinolactonas, que son indispensables en el mecanismo de quorum-sensing de E. caratovora. Esta circunstancia, puede ser una alternativa importante para el control de la enfermedad de la pudrición blanda de la papa. Considerando lo anterior, en este artículo se describe el proceso que emplea la bacteria Bacillus thuringiensis para inhibir la actividad de E. caratovora.

1. Departamento de Agricultura y Protección al Consumidor- Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la alimentación FAO. 2007. tesoro enterrado: la papa. Agricultura
2. Recurso en línea: http://www.fao.org/AG/esp/revista/0611sp1.htm. Revisado 15 de abril 2012.
3. FEDEPAPA - Federación Colombiana de Productores de Papa. 2010. Acuerdo de competitividad de la cadena agroalimentaria de la papa en Colombia. P. 72.
4. Alonso F. El cultivo de la papa, Editorial Mundi-Prensa, Madrid. 1996. pp. 13-29.
5. Moreno D. Problemática del cultivo de la papa en Colombia. Papas Colombianas. Bogotá: Comunicaciones y asociados. 1996; pp 93-102.
6. Espinal C., Martínez H., Pinzón N., Barrios C. 2005. La cadena de la papa en Colombia una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Observatorio de Agrocadenas, Bogotá D.C. Colombia.
7. Pardo-López L., Soberón M., Bravo A. 2013. Bacillus thuringiensis insecticidal three-domain Cry toxins: mode of action, insect resistance and consequences for crop protection. FEMS Microbiol. Rev. 37: 3-22.
8. Porcar M., Juárez-Pérez V. Aislamiento y establecimiento de una colección de Bacillus thuringiensis. En Bacillus thuringiensis en el control biológico. Bravo, A. y Cerón, J. eds. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá, Colombia. 2004. pp. 69-100.
9. Bravo A, Cerón J. Ecología y distribución de Bacillus thuringiensis. En Bacillus thuringiensis en el Control Biologico..eds. Universidad Nacional de Colombia. Bogota, Colombia, 2004. pp 49 – 68.
10. Ruiz de Escudero I., Ibañez I., Padilla M., Carnero A., Caballero P. Aislamiento y caracterización de nuevas cepas de Bacillus thuringiensis procedentes de tierras canarias. Bol. San. Veg. Plagas. 2004. 30: 703-712.
11. Zhou Y., Choi Y.L., Sun M., Yu Z. Novel roles of Bacillus thuringiensis to control plant diseases. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2008. 80: 563-572.
12. Toth I.K., Bell K.S., Holeva M.C., Birch P.R. Soft rot erwiniae: from genes to genomes. Mol. Plant Pathol. 2003. 4: 17-30.
13. Rahman M.M., Ali M.E., Khan A.A., Akanda A.M., Uddin M.K., Hashim U., Abd Hamid S.B. Isolation, characterization, and identification of biological control agent for potato soft rot in bangladesh. Scientific World Journal. 2012: 723-293.
14. García R. Especies y sub especies de Erwinia, causantes de la pudrición blanda y pierna negra en la papa cultivada en el estado de Merida-Venezuela. Rev. Forest. Venez. 2000. 44: 107-114.
15. Andresen L, Sala E, Kõiv V, Mäe A. A role for the Rcs phosphorelay in regulating expression of plant cell wall degrading enzymes in Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum. Microbiology. 2010. 156: 1323-1334.
16. Toth I.K., Birch P.R.J. Rotting softly and stealthily. Current Opinion in Plant Biology. 2005. 8: 424-429.
17. Dong Y.-H., Zhang X.-F., Xu J.-L., Zhang L.-H. Insecticidal Bacillus thuringiensis Silences Erwinia carotovora Virulence by a New Form of Microbial Antagonism, Signal Interference. Appl. Environ. Microbiol. 2004. 70: 954-960.
18. Zhang L. Fusion of the genes for AHL-lactonase and S layer protein in Bacillus thuringiensis increases its ability to inhibit soft rot caused by Erwinia carotovora. 2007.
19. Park S-J., Park S-Y., Ryu C-M., Park S-H., Lee J-K. The Role of AiiA, a Quorum-Quenching Enzyme from Bacillus thuringiensis, on the Rhizosphere Competence. J. Microbiol. Biotechnol. 2008. 18: 1518-1521.
20. Liu D., Momb J., Thomas P.W., Moulin A., Petsko G.A., Fast W., Ringe D. 2008. Mechanism of the quorum-quenching lactonase (AiiA) from Bacillus thuringiensis. 1. Product-bound structures. Biochemistry. 47: 7706-7714.
21. Momb J., Wang C., Liu D., Thomas P.W., Petsko G.A., Guo H., Ringe D., Fast W. 2008. Mechanism of the quorum quenching lactonase (AiiA) from Bacillus thuringiensis. 2. Substrate modeling and active site mutations. Biochemistry. 47: 7715-7725.
22. Ban H., Chai X., Lin Y., Zhou Y., Peng D., Zhou Y., Zou Y., Yu Z., Sun M. 2009. Transgenic Amorphophallus konjac expressing synthesized acyl-homoserine lactonase (aiiA) gene exhibit enhanced resistance to soft rot disease. Plant Cell Rep. 28:1847-1855.
23. Barbey C., Crépin A., Bergeau D., Ouchiha A., Mijouin L., Taupin L., Orange N., Feuilloley M., Dufour A., Burini J.F., Latour X. 2013. In Planta Biocontrol of Pectobacterium atrosepticum by Rhodococcus erythropolis Involves Silencing of Pathogen Communication by the Rhodococcal Gamma-Lactone Catabolic Pathway. PLoS One. 8: e66642.
24. Lee S. J., Park S.-Y., Lee J.-J., Yum D.-Y., Koo B.-T., Lee J.-K. 2002. Genes Encoding the N-Acyl Homoserine Lactone-Degrading Enzyme Are Widespread in Many Subspecies of Bacillus thuringiensis. Appl. Environ. Microbiol. 68: 3919–3924.
25. -------------------------------------------------------------------------------
26. DOI: http://dx.doi.org/10.22490/24629448.1024